Imported Upstream version 0.1.10
[samtools.git] / samtools.1
index cc421d4bc34fd53efa123b4630fcbccb4ca58708..e87bef7e788f09d1c0c38219f231062868a010d4 100644 (file)
@@ -1,4 +1,4 @@
-.TH samtools 1 "27 October 2010" "samtools-0.1.9" "Bioinformatics tools"
+.TH samtools 1 "15 November 2010" "samtools-0.1.10" "Bioinformatics tools"
 .SH NAME
 .PP
 samtools - Utilities for the Sequence Alignment/Map (SAM) format
 .SH NAME
 .PP
 samtools - Utilities for the Sequence Alignment/Map (SAM) format
@@ -20,7 +20,7 @@ samtools faidx ref.fasta
 .PP
 samtools pileup -vcf ref.fasta aln.sorted.bam
 .PP
 .PP
 samtools pileup -vcf ref.fasta aln.sorted.bam
 .PP
-samtools mpileup -C50 -agf ref.fasta -r chr3:1,000-2,000 in1.bam in2.bam
+samtools mpileup -C50 -gf ref.fasta -r chr3:1,000-2,000 in1.bam in2.bam
 .PP
 samtools tview aln.sorted.bam ref.fasta
 
 .PP
 samtools tview aln.sorted.bam ref.fasta
 
@@ -47,7 +47,7 @@ entire alignment file unless it is asked to do so.
 
 .TP 10
 .B view
 
 .TP 10
 .B view
-samtools view [-bhuHS] [-t in.refList] [-o output] [-f reqFlag] [-F
+samtools view [-bchuHS] [-t in.refList] [-o output] [-f reqFlag] [-F
 skipFlag] [-q minMapQ] [-l library] [-r readGroup] [-R rgFile] <in.bam>|<in.sam> [region1 [...]]
 
 Extract/print all or sub alignments in SAM or BAM format. If no region
 skipFlag] [-q minMapQ] [-l library] [-r readGroup] [-R rgFile] <in.bam>|<in.sam> [region1 [...]]
 
 Extract/print all or sub alignments in SAM or BAM format. If no region
@@ -65,11 +65,11 @@ format: `chr2' (the whole chr2), `chr2:1000000' (region starting from
 .B -b
 Output in the BAM format.
 .TP
 .B -b
 Output in the BAM format.
 .TP
-.BI -f " INT"
+.BI -f \ INT
 Only output alignments with all bits in INT present in the FLAG
 field. INT can be in hex in the format of /^0x[0-9A-F]+/ [0]
 .TP
 Only output alignments with all bits in INT present in the FLAG
 field. INT can be in hex in the format of /^0x[0-9A-F]+/ [0]
 .TP
-.BI -F " INT"
+.BI -F \ INT
 Skip alignments with bits present in INT [0]
 .TP
 .B -h
 Skip alignments with bits present in INT [0]
 .TP
 .B -h
@@ -78,19 +78,19 @@ Include the header in the output.
 .B -H
 Output the header only.
 .TP
 .B -H
 Output the header only.
 .TP
-.BI -l " STR"
+.BI -l \ STR
 Only output reads in library STR [null]
 .TP
 Only output reads in library STR [null]
 .TP
-.BI -o " FILE"
+.BI -o \ FILE
 Output file [stdout]
 .TP
 Output file [stdout]
 .TP
-.BI -q " INT"
+.BI -q \ INT
 Skip alignments with MAPQ smaller than INT [0]
 .TP
 Skip alignments with MAPQ smaller than INT [0]
 .TP
-.BI -r " STR"
+.BI -r \ STR
 Only output reads in read group STR [null]
 .TP
 Only output reads in read group STR [null]
 .TP
-.BI -R " FILE"
+.BI -R \ FILE
 Output reads in read groups listed in
 .I FILE
 [null]
 Output reads in read groups listed in
 .I FILE
 [null]
@@ -100,7 +100,16 @@ Input is in SAM. If @SQ header lines are absent, the
 .B `-t'
 option is required.
 .TP
 .B `-t'
 option is required.
 .TP
-.BI -t " FILE"
+.B -c
+Instead of printing the alignments, only count them and print the
+total number. All filter options, such as
+.B `-f',
+.B `-F'
+and
+.B `-q'
+, are taken into account.
+.TP
+.BI -t \ FILE
 This file is TAB-delimited. Each line must contain the reference name
 and the length of the reference, one line for each distinct reference;
 additional fields are ignored. This file also defines the order of the
 This file is TAB-delimited. Each line must contain the reference name
 and the length of the reference, one line for each distinct reference;
 additional fields are ignored. This file also defines the order of the
@@ -126,135 +135,6 @@ press `?' for help and press `g' to check the alignment start from a
 region in the format like `chr10:10,000,000' or `=10,000,000' when
 viewing the same reference sequence.
 
 region in the format like `chr10:10,000,000' or `=10,000,000' when
 viewing the same reference sequence.
 
-.TP
-.B pileup
-samtools pileup [-2sSBicv] [-f in.ref.fasta] [-t in.ref_list] [-l
-in.site_list] [-C capMapQ] [-M maxMapQ] [-T theta] [-N nHap] [-r
-pairDiffRate] [-m mask] [-d maxIndelDepth] [-G indelPrior]
-<in.bam>|<in.sam>
-
-Print the alignment in the pileup format. In the pileup format, each
-line represents a genomic position, consisting of chromosome name,
-coordinate, reference base, read bases, read qualities and alignment
-mapping qualities. Information on match, mismatch, indel, strand,
-mapping quality and start and end of a read are all encoded at the read
-base column. At this column, a dot stands for a match to the reference
-base on the forward strand, a comma for a match on the reverse strand,
-a '>' or '<' for a reference skip, `ACGTN' for a mismatch on the forward
-strand and `acgtn' for a mismatch on the reverse strand. A pattern
-`\\+[0-9]+[ACGTNacgtn]+' indicates there is an insertion between this
-reference position and the next reference position. The length of the
-insertion is given by the integer in the pattern, followed by the
-inserted sequence. Similarly, a pattern `-[0-9]+[ACGTNacgtn]+'
-represents a deletion from the reference. The deleted bases will be
-presented as `*' in the following lines. Also at the read base column, a
-symbol `^' marks the start of a read. The ASCII of the character
-following `^' minus 33 gives the mapping quality. A symbol `$' marks the
-end of a read segment.
-
-If option
-.B -c
-is applied, the consensus base, Phred-scaled consensus quality, SNP
-quality (i.e. the Phred-scaled probability of the consensus being
-identical to the reference) and root mean square (RMS) mapping quality
-of the reads covering the site will be inserted between the `reference
-base' and the `read bases' columns. An indel occupies an additional
-line. Each indel line consists of chromosome name, coordinate, a star,
-the genotype, consensus quality, SNP quality, RMS mapping quality, #
-covering reads, the first alllele, the second allele, # reads supporting
-the first allele, # reads supporting the second allele and # reads
-containing indels different from the top two alleles.
-
-The position of indels is offset by -1.
-
-.B OPTIONS:
-.RS
-.TP 10
-.B -B
-Disable the BAQ computation. See the
-.B mpileup
-command for details.
-.TP
-.B -c
-Call the consensus sequence using SOAPsnp consensus model. Options
-.BR -T ", " -N ", " -I " and " -r
-are only effective when
-.BR -c " or " -g
-is in use.
-.TP
-.BI -C " INT"
-Coefficient for downgrading the mapping quality of poorly mapped
-reads. See the
-.B mpileup
-command for details. [0]
-.TP
-.BI -d " INT"
-Use the first
-.I NUM
-reads in the pileup for indel calling for speed up. Zero for unlimited. [1024]
-.TP
-.BI -f " FILE"
-The reference sequence in the FASTA format. Index file
-.I FILE.fai
-will be created if
-absent.
-.TP
-.B -g
-Generate genotype likelihood in the binary GLFv3 format. This option
-suppresses -c, -i and -s. This option is deprecated by the
-.B mpileup
-command.
-.TP
-.B -i
-Only output pileup lines containing indels.
-.TP
-.BI -I " INT"
-Phred probability of an indel in sequencing/prep. [40]
-.TP
-.BI -l " FILE"
-List of sites at which pileup is output. This file is space
-delimited. The first two columns are required to be chromosome and
-1-based coordinate. Additional columns are ignored. It is
-recommended to use option
-.TP
-.BI -m " INT"
-Filter reads with flag containing bits in
-.I INT
-[1796]
-.TP
-.BI -M " INT"
-Cap mapping quality at INT [60]
-.TP
-.BI -N " INT"
-Number of haplotypes in the sample (>=2) [2]
-.TP
-.BI -r " FLOAT"
-Expected fraction of differences between a pair of haplotypes [0.001]
-.TP
-.B -s
-Print the mapping quality as the last column. This option makes the
-output easier to parse, although this format is not space efficient.
-.TP
-.B -S
-The input file is in SAM.
-.TP
-.BI -t " FILE"
-List of reference names ane sequence lengths, in the format described
-for the
-.B import
-command. If this option is present, samtools assumes the input
-.I <in.alignment>
-is in SAM format; otherwise it assumes in BAM format.
-.B -s
-together with
-.B -l
-as in the default format we may not know the mapping quality.
-.TP
-.BI -T " FLOAT"
-The theta parameter (error dependency coefficient) in the maq consensus
-calling model [0.85]
-.RE
-
 .TP
 .B mpileup
 samtools mpileup [-Bug] [-C capQcoef] [-r reg] [-f in.fa] [-l list] [-M capMapQ] [-Q minBaseQ] [-q minMapQ] in.bam [in2.bam [...]]
 .TP
 .B mpileup
 samtools mpileup [-Bug] [-C capQcoef] [-r reg] [-f in.fa] [-l list] [-M capMapQ] [-Q minBaseQ] [-q minMapQ] in.bam [in2.bam [...]]
@@ -272,37 +152,64 @@ quality (BAQ). BAQ is the Phred-scaled probability of a read base being
 misaligned. Applying this option greatly helps to reduce false SNPs
 caused by misalignments.
 .TP
 misaligned. Applying this option greatly helps to reduce false SNPs
 caused by misalignments.
 .TP
-.BI -C " INT"
+.BI -C \ INT
 Coefficient for downgrading mapping quality for reads containing
 excessive mismatches. Given a read with a phred-scaled probability q of
 being generated from the mapped position, the new mapping quality is
 about sqrt((INT-q)/INT)*INT. A zero value disables this
 Coefficient for downgrading mapping quality for reads containing
 excessive mismatches. Given a read with a phred-scaled probability q of
 being generated from the mapped position, the new mapping quality is
 about sqrt((INT-q)/INT)*INT. A zero value disables this
-functionality; if enabled, the recommended value is 50. [0]
+functionality; if enabled, the recommended value for BWA is 50. [0]
+.TP
+.BI -e \ INT
+Phred-scaled gap extension sequencing error probability. Reducing
+.I INT
+leads to longer indels. [20]
 .TP
 .TP
-.BI -f " FILE"
+.BI -f \ FILE
 The reference file [null]
 .TP
 .B -g
 Compute genotype likelihoods and output them in the binary call format (BCF).
 .TP
 The reference file [null]
 .TP
 .B -g
 Compute genotype likelihoods and output them in the binary call format (BCF).
 .TP
-.B -u
-Similar to
-.B -g
-except that the output is uncompressed BCF, which is preferred for pipeing.
-.TP
-.BI -l " FILE"
+.BI -h \ INT
+Coefficient for modeling homopolymer errors. Given an
+.IR l -long
+homopolymer
+run, the sequencing error of an indel of size
+.I s
+is modeled as
+.IR INT * s / l .
+[100]
+.TP
+.BI -l \ FILE
 File containing a list of sites where pileup or BCF is outputted [null]
 .TP
 File containing a list of sites where pileup or BCF is outputted [null]
 .TP
-.BI -q " INT"
+.BI -o \ INT
+Phred-scaled gap open sequencing error probability. Reducing
+.I INT
+leads to more indel calls. [40]
+.TP
+.BI -P \ STR
+Comma dilimited list of platforms (determined by
+.BR @RG-PL )
+from which indel candidates are obtained. It is recommended to collect
+indel candidates from sequencing technologies that have low indel error
+rate such as ILLUMINA. [all]
+.TP
+.BI -q \ INT
 Minimum mapping quality for an alignment to be used [0]
 .TP
 Minimum mapping quality for an alignment to be used [0]
 .TP
-.BI -Q " INT"
+.BI -Q \ INT
 Minimum base quality for a base to be considered [13]
 .TP
 Minimum base quality for a base to be considered [13]
 .TP
-.BI -r " STR"
+.BI -r \ STR
 Only generate pileup in region
 .I STR
 [all sites]
 Only generate pileup in region
 .I STR
 [all sites]
+.TP
+.B -u
+Similar to
+.B -g
+except that the output is uncompressed BCF, which is preferred for piping.
 .RE
 
 .TP
 .RE
 
 .TP
@@ -336,7 +243,7 @@ Output the final alignment to the standard output.
 .B -n
 Sort by read names rather than by chromosomal coordinates
 .TP
 .B -n
 Sort by read names rather than by chromosomal coordinates
 .TP
-.B -m INT
+.BI -m \ INT
 Approximately the maximum required memory. [500000000]
 .RE
 
 Approximately the maximum required memory. [500000000]
 .RE
 
@@ -359,7 +266,7 @@ and the headers of other files will be ignored.
 .B OPTIONS:
 .RS
 .TP 8
 .B OPTIONS:
 .RS
 .TP 8
-.BI -h " FILE"
+.BI -h \ FILE
 Use the lines of
 .I FILE
 as `@' headers to be copied to
 Use the lines of
 .I FILE
 as `@' headers to be copied to
@@ -370,7 +277,7 @@ replacing any header lines that would otherwise be copied from
 is actually in SAM format, though any alignment records it may contain
 are ignored.)
 .TP
 is actually in SAM format, though any alignment records it may contain
 are ignored.)
 .TP
-.BI -R " STR"
+.BI -R \ STR
 Merge files in the specified region indicated by
 .I STR
 .TP
 Merge files in the specified region indicated by
 .I STR
 .TP
@@ -457,6 +364,11 @@ tag. Output SAM by default.
 .B OPTIONS:
 .RS
 .TP 8
 .B OPTIONS:
 .RS
 .TP 8
+.B -A
+When used jointly with
+.B -r
+this option overwrites the original base quality.
+.TP 8
 .B -e
 Convert a the read base to = if it is identical to the aligned reference
 base. Indel caller does not support the = bases at the moment.
 .B -e
 Convert a the read base to = if it is identical to the aligned reference
 base. Indel caller does not support the = bases at the moment.
@@ -470,14 +382,143 @@ Output compressed BAM
 .B -S
 The input is SAM with header lines
 .TP
 .B -S
 The input is SAM with header lines
 .TP
-.BI -C " INT"
+.BI -C \ INT
 Coefficient to cap mapping quality of poorly mapped reads. See the
 .B pileup
 command for details. [0]
 .TP
 .B -r
 Coefficient to cap mapping quality of poorly mapped reads. See the
 .B pileup
 command for details. [0]
 .TP
 .B -r
-Perform probabilistic realignment to compute BAQ, which will be used to
-cap base quality.
+Compute the BQ tag without changing the base quality.
+.RE
+
+.TP
+.B pileup
+samtools pileup [-2sSBicv] [-f in.ref.fasta] [-t in.ref_list] [-l
+in.site_list] [-C capMapQ] [-M maxMapQ] [-T theta] [-N nHap] [-r
+pairDiffRate] [-m mask] [-d maxIndelDepth] [-G indelPrior]
+<in.bam>|<in.sam>
+
+Print the alignment in the pileup format. In the pileup format, each
+line represents a genomic position, consisting of chromosome name,
+coordinate, reference base, read bases, read qualities and alignment
+mapping qualities. Information on match, mismatch, indel, strand,
+mapping quality and start and end of a read are all encoded at the read
+base column. At this column, a dot stands for a match to the reference
+base on the forward strand, a comma for a match on the reverse strand,
+a '>' or '<' for a reference skip, `ACGTN' for a mismatch on the forward
+strand and `acgtn' for a mismatch on the reverse strand. A pattern
+`\\+[0-9]+[ACGTNacgtn]+' indicates there is an insertion between this
+reference position and the next reference position. The length of the
+insertion is given by the integer in the pattern, followed by the
+inserted sequence. Similarly, a pattern `-[0-9]+[ACGTNacgtn]+'
+represents a deletion from the reference. The deleted bases will be
+presented as `*' in the following lines. Also at the read base column, a
+symbol `^' marks the start of a read. The ASCII of the character
+following `^' minus 33 gives the mapping quality. A symbol `$' marks the
+end of a read segment.
+
+If option
+.B -c
+is applied, the consensus base, Phred-scaled consensus quality, SNP
+quality (i.e. the Phred-scaled probability of the consensus being
+identical to the reference) and root mean square (RMS) mapping quality
+of the reads covering the site will be inserted between the `reference
+base' and the `read bases' columns. An indel occupies an additional
+line. Each indel line consists of chromosome name, coordinate, a star,
+the genotype, consensus quality, SNP quality, RMS mapping quality, #
+covering reads, the first alllele, the second allele, # reads supporting
+the first allele, # reads supporting the second allele and # reads
+containing indels different from the top two alleles.
+
+.B NOTE:
+Since 0.1.10, the `pileup' command is deprecated by `mpileup'.
+
+.B OPTIONS:
+.RS
+.TP 10
+.B -B
+Disable the BAQ computation. See the
+.B mpileup
+command for details.
+.TP
+.B -c
+Call the consensus sequence. Options
+.BR -T ", " -N ", " -I " and " -r
+are only effective when
+.BR -c " or " -g
+is in use.
+.TP
+.BI -C \ INT
+Coefficient for downgrading the mapping quality of poorly mapped
+reads. See the
+.B mpileup
+command for details. [0]
+.TP
+.BI -d \ INT
+Use the first
+.I NUM
+reads in the pileup for indel calling for speed up. Zero for unlimited. [1024]
+.TP
+.BI -f \ FILE
+The reference sequence in the FASTA format. Index file
+.I FILE.fai
+will be created if
+absent.
+.TP
+.B -g
+Generate genotype likelihood in the binary GLFv3 format. This option
+suppresses -c, -i and -s. This option is deprecated by the
+.B mpileup
+command.
+.TP
+.B -i
+Only output pileup lines containing indels.
+.TP
+.BI -I \ INT
+Phred probability of an indel in sequencing/prep. [40]
+.TP
+.BI -l \ FILE
+List of sites at which pileup is output. This file is space
+delimited. The first two columns are required to be chromosome and
+1-based coordinate. Additional columns are ignored. It is
+recommended to use option
+.TP
+.BI -m \ INT
+Filter reads with flag containing bits in
+.I INT
+[1796]
+.TP
+.BI -M \ INT
+Cap mapping quality at INT [60]
+.TP
+.BI -N \ INT
+Number of haplotypes in the sample (>=2) [2]
+.TP
+.BI -r \ FLOAT
+Expected fraction of differences between a pair of haplotypes [0.001]
+.TP
+.B -s
+Print the mapping quality as the last column. This option makes the
+output easier to parse, although this format is not space efficient.
+.TP
+.B -S
+The input file is in SAM.
+.TP
+.BI -t \ FILE
+List of reference names ane sequence lengths, in the format described
+for the
+.B import
+command. If this option is present, samtools assumes the input
+.I <in.alignment>
+is in SAM format; otherwise it assumes in BAM format.
+.B -s
+together with
+.B -l
+as in the default format we may not know the mapping quality.
+.TP
+.BI -T \ FLOAT
+The theta parameter (error dependency coefficient) in the maq consensus
+calling model [0.85]
 .RE
 
 .SH SAM FORMAT
 .RE
 
 .SH SAM FORMAT
@@ -573,9 +614,8 @@ will be attached
 .IP o 2
 Call SNPs and short indels for one diploid individual:
 
 .IP o 2
 Call SNPs and short indels for one diploid individual:
 
-  samtools pileup -vcf ref.fa aln.bam > var.raw.plp
-  samtools.pl varFilter -D 100 var.raw.plp > var.flt.plp
-  awk '($3=="*"&&$6>=50)||($3!="*"&&$6>=20)' var.flt.plp > var.final.plp
+  samtools mpileup -ugf ref.fa aln.bam | bcftools view -bvcg - > var.raw.bcf
+  bcftools view var.raw.bcf | vcfutils.pl varFilter -D 100 > var.flt.vcf
 
 The
 .B -D
 
 The
 .B -D
@@ -583,37 +623,37 @@ option of varFilter controls the maximum read depth, which should be
 adjusted to about twice the average read depth.  One may consider to add
 .B -C50
 to
 adjusted to about twice the average read depth.  One may consider to add
 .B -C50
 to
-.B pileup
+.B mpileup
 if mapping quality is overestimated for reads containing excessive
 mismatches. Applying this option usually helps
 .B BWA-short
 if mapping quality is overestimated for reads containing excessive
 mismatches. Applying this option usually helps
 .B BWA-short
-but may not other mappers. It also potentially increases reference
-biases.
+but may not other mappers.
 
 .IP o 2
 
 .IP o 2
-Call SNPs (not short indels) for multiple diploid individuals:
+Call SNPs and short indels for multiple diploid individuals:
 
 
-  samtools mpileup -augf ref.fa *.bam | bcftools view -bcv - > snp.raw.bcf
-  bcftools view snp.raw.bcf | vcfutils.pl filter4vcf -D 2000 | bgzip > snp.flt.vcf.gz
+  samtools mpileup -P ILLUMINA -ugf ref.fa *.bam | bcftools view -bcvg - > var.raw.bcf
+  bcftools view var.raw.bcf | vcfutils.pl varFilter -D 2000 > var.flt.vcf
 
 Individuals are identified from the
 .B SM
 tags in the
 .B @RG
 header lines. Individuals can be pooled in one alignment file; one
 
 Individuals are identified from the
 .B SM
 tags in the
 .B @RG
 header lines. Individuals can be pooled in one alignment file; one
-individual can also be separated into multiple files. Similarly, one may
-consider to apply
-.B -C50
-to
-.BR mpileup .
-SNP calling in this way also works for single sample and has the
-advantage of enabling more powerful filtering. The drawback is the lack
-of short indel calling, which may be implemented in future.
+individual can also be separated into multiple files. The
+.B -P
+option specifies that indel candidates should be collected only from
+read groups with the
+.B @RG-PL
+tag set to
+.IR ILLUMINA .
+Collecting indel candidates from reads sequenced by an indel-prone
+technology may affect the performance of indel calling.
 
 .IP o 2
 Derive the allele frequency spectrum (AFS) on a list of sites from multiple individuals:
 
 
 .IP o 2
 Derive the allele frequency spectrum (AFS) on a list of sites from multiple individuals:
 
-  samtools mpileup -gf ref.fa *.bam > all.bcf
+  samtools mpileup -Igf ref.fa *.bam > all.bcf
   bcftools view -bl sites.list all.bcf > sites.bcf
   bcftools view -cGP cond2 sites.bcf > /dev/null 2> sites.1.afs
   bcftools view -cGP sites.1.afs sites.bcf > /dev/null 2> sites.2.afs
   bcftools view -bl sites.list all.bcf > sites.bcf
   bcftools view -cGP cond2 sites.bcf > /dev/null 2> sites.1.afs
   bcftools view -cGP sites.1.afs sites.bcf > /dev/null 2> sites.2.afs
@@ -630,7 +670,7 @@ commands estimate AFS by EM.
 .IP o 2
 Dump BAQ applied alignment for other SNP callers:
 
 .IP o 2
 Dump BAQ applied alignment for other SNP callers:
 
-  samtools calmd -br aln.bam > aln.baq.bam
+  samtools calmd -bAr aln.bam > aln.baq.bam
 
 It adds and corrects the
 .B NM
 
 It adds and corrects the
 .B NM
@@ -640,7 +680,7 @@ tags at the same time. The
 .B calmd
 command also comes with the
 .B -C
 .B calmd
 command also comes with the
 .B -C
-option, the same as the on in
+option, the same as the one in
 .B pileup
 and
 .BR mpileup .
 .B pileup
 and
 .BR mpileup .
@@ -666,8 +706,9 @@ although a little slower.
 .PP
 Heng Li from the Sanger Institute wrote the C version of samtools. Bob
 Handsaker from the Broad Institute implemented the BGZF library and Jue
 .PP
 Heng Li from the Sanger Institute wrote the C version of samtools. Bob
 Handsaker from the Broad Institute implemented the BGZF library and Jue
-Ruan from Beijing Genomics Institute wrote the RAZF library. Various
-people in the 1000 Genomes Project contributed to the SAM format
+Ruan from Beijing Genomics Institute wrote the RAZF library. John
+Marshall and Petr Danecek contribute to the source code and various
+people from the 1000 Genomes Project have contributed to the SAM format
 specification.
 
 .SH SEE ALSO
 specification.
 
 .SH SEE ALSO